Últimas noticias sobre la perlicultura en Tahití.
29/10/2001
Introducción
La perlicultura es una forma de acuicultura: de la cooperación entre humanos y moluscos bivalvos nacen las perlas. Sin embargo, a veces las ostras perlíferas mueren en masa, una plaga que podría llevar a la industria al borde del abismo.
En Myanmar, se han observado tasas de mortalidad anormalmente altas desde 1983. Un estudio permitió detectar a la bacteria Vibrio como responsable.
El objetivo de esta comunicación es presentar información sobre estas mortalidades masivas, enumerar y describir las causas y los síntomas, y proponer sugerencias basadas en la literatura y la experiencia de campo.
El fenómeno de la mortalidad masiva
En 1969–1970, mortandades masivas afectaron las granjas de Port Moresby (Papúa Nueva Guinea) y de Kuri Bay y Smith’s Harbour (Australia). En muchos casos, casi todos los individuos sucumbieron; en jaulas de diez ostras, solo sobrevivía una (George, 1992).
En esa época, la tasa media de mortalidad de Pinctada maxima rondaba el 80 %, mientras que en Australia, desde 1974, oscilaba entre el 30 y 60 %. Un estudio de tres años (1980–1983) concluyó que las condiciones de transporte (37 h en barco, incluso 4–5 días a bordo en época de cosecha) y la alta densidad en contenedores, que reducía la circulación de agua y favorecía las bacterias, eran la causa. Se identificó a Vibrio harveyi como agente principal (Dybdahl & Pass, 1985).
Altas mortalidades (30 a 85 %) también se registraron en la mayoría de las regiones de Indonesia entre 1992 y 1994, probablemente relacionadas con anomalías climáticas que modificaron corrientes, temperaturas y plancton (Anónimo I, 1994).
En 1985–1986, en Takapoto (Polinesia Francesa), las granjas de alevines y de ostras injertadas sufrieron pérdidas del 50 a 80 % (Intes, 1995b).
El sector Akoya en China también experimentó un aumento de mortalidad: tras 4–5 meses, ninguna capa de nácar cubría el núcleo; se rechazaban o no inducían secreción los núcleos blanqueados (China/Vietnam), y la mayoría de las ostras perecían (Anónimo II, 1994).
En Japón, la mortalidad, ya elevada desde una década atrás, alcanzó su pico en 1996–1997: 150 millones de nácares Akoya muertos, con tasas medias del 25 al 60 % según las localidades (Canedy, 1998; Anónimo, 1998).
Las causas del fenómeno
La Tabla 1 resume doce causas principales (en orden alfabético) de mortalidad aumentada en ostras perlíferas recogidas en la literatura.
Los síntomas
El debilitamiento metabólico de las ostras infectadas o moribundas se manifiesta por numerosos signos. La presencia de uno o varios de los 16 síntomas de la tabla siguiente indica un mal estado de salud.
A veces una ostra se recupera: una zona de demarcación clara en las valvas indica una infección superada.
Discusión
Las enfermedades infecciosas frenan la acuicultura de invertebrados marinos. En condiciones normales, las ostras toleran un estrés moderado, pero siguen siendo vulnerables a los patógenos. La etiología sigue siendo poco conocida, pero los exámenes brutos e histopatológicos proporcionan ahora referencias útiles para diagnosticar las enfermedades de P. maxima (Humphrey et al., 1999).
Más allá de los factores biológicos, parámetros fisicoquímicos (descenso de salinidad, aumento térmico, mareas frías/rojas, H2S, contaminación doméstica/industrial) pueden desencadenar graves problemas (Mizumoto, 1979; Anónimo I, 1994).
Las catástrofes naturales (huracanes, terremotos, tsunamis) impactan fuertemente los stocks: seis huracanes en las Tuamotu (1992–1993) arrasaron bancos someros y granjas (Intes, 1995a); en Indonesia (1992), terremotos y tsunamis debilitaron las ostras (Anónimo I, 1994). Para mejorar la supervivencia post-nucleación, los núcleos (Japón/EE.UU.) se recubren con antibióticos, con buenos resultados (Akiyama et al., 1998; Anónimo, 1999).
George (1992) sostiene que la mortalidad masiva es recurrente en Japón desde 1960 y en las granjas de los mares del Sur que trabajan con especialistas nipones; los desplazamientos de técnicos/instrumentos propagarían los agentes patógenos (véase también Aquilina, 1999). De ahí la importancia de una esterilización sistemática antes y después de cada desplazamiento.
Las mortalidades relacionadas con el confinamiento durante el transporte pueden reducirse con mejor circulación de agua, menor densidad por contenedor, mayor higiene y la evitación de transportes durante los meses más fríos (Pass et al., 1987).
El transporte hacia zonas sin colonias naturales puede introducir enfermedades, parásitos y depredadores presentes en las conchas. Evitar introducciones desde zonas infectadas o afectadas por desastres (ciclones) donde los animales están debilitados.
Braley et al. (1993) señalan que una ostra afectada por una enfermedad “desconocida” puede parecer sana y luego, en 2–3 días, convertirse en una concha abierta con tejidos necróticos; por ello es difícil certificar que un stock está sano.
Salvo casos evidentes (tsunami), los agentes causales suelen permanecer no identificados. Como indicaba el Sr. Koichi Takahashi (Mikimo America) sobre 1996–1997 en Japón: “se consideran todas las hipótesis; es extremadamente difícil determinar la causa principal” (Canedy, 1998).
Es esencial comprender mejor el ecosistema de las ostras perlíferas: gestión del número de ostras, espaciado, mantenimiento, limitaciones de transporte, vigilancia de las condiciones hidrológicas. Intercambios importantes de agua (lagunas abiertas, bahías/estuarios, costas expuestas) reducen el riesgo de alteración de la calidad del agua (Anderson, 1998).
Sugerencias
Sobre la base de la experiencia de campo y la bibliografía, se proponen recomendaciones (Tabla 3).
Agradecimientos
Agradecimientos a U Mange Toe (administrador) y U Khin Nyunt (director general, Myanmar Pearl Enterprise) por sus ánimos; y al Sr. Neil A. Sims, Sr. Martin Coereli y Sr. Rand Dybdahl por las referencias proporcionadas.
Tabla 1: Causas de mortalidad aumentada en ostras perlíferas
Bacteria(s)
Cambio climático
Mala gestión de la granja
Bioincrustaciones
Catástrofes naturales (tsunami, terremoto, etc.)
Núcleo
Parásitos
Contaminación
Depredadores
Marea roja
Manipulación brusca
Virus
Tabla 2: Síntomas de un debilitamiento del estado fisiológico
Músculo aductor rojo/marrón
Tiempo de reacción del músculo aductor prolongado (estimulación del borde del manto)
Masa visceral blanda, vítrea, aspecto acuoso
Aumento de secreciones mucosas
Malformación de los lóbulos del manto
Necrosis de la parte externa del manto
Secreción de materia orgánica amorfa pesada en la periferia nacarada de las valvas
Depósito marronáceo en el interior de las valvas
Crecimiento irregular/retorcido de la concha
Interrupción temporal/definitiva del crecimiento
Ventrículo hinchado/lleno de sangre
Recto hinchado
Crecimiento detenido → muerte frecuente
Capacidades reproductivas desaparecidas/alteradas
Estilete cristalino menos activo; disminución de excrementos
Producción perlífera alterada: secreción de calcita en lugar de aragonito
Tabla 3: Sugerencias para la gestión de las granjas perlíferas
Ostra perlífera
Vigilar cualquier muerte sospechosa: detectar temprano el primer caso de una serie.
Detectar cualquier anomalía en la concha/masa visceral: identificar problemas que anuncian mortalidad elevada.
No transportar ostras de una granja a otra: prevenir la propagación de enfermedades.
Zona de cultivo
Alinear las filas de ostras en dirección a la corriente: mejorar la circulación del agua entre filas y entre valvas.
Dejar un espaciado suficiente entre filas: higiene y aporte alimentario adecuados.
Almacenar las bioincrustaciones lejos de las zonas de cultivo: evitar su acumulación y materia muerta.
Vigilar cualquier abundancia anormal de depredadores: estimar la tasa probable de depredación.
Injerto
Esterilizar regularmente todos los instrumentos (incluidos guantes): evitar infecciones iatrogénicas.
Esterilizar el material de los técnicos itinerantes antes y después de cada desplazamiento: evitar la diseminación de agentes.
No desechar la carne de ostras infectadas en el mar; enterrarla: prevenir nuevas infecciones.
Otros
Limitar a 5 separaciones por jaula (10 ostras/jaula): reducir soportes para bioincrustaciones y competencia.
Evitar cualquier manipulación brusca: limitar el estrés, especialmente en ostras infectadas.
Controlar regularmente las condiciones hidrológicas: detectar rápidamente cualquier cambio ambiental.
Estudiar/analizar casos pasados: identificar señales tempranas de desviación.